Peking Yikotai Öko-Technologie Co., Ltd.
Startseite>Produkte>FL6000 Doppelmodulation Chlorophyl Fluoreszenzmesser
FL6000 Doppelmodulation Chlorophyl Fluoreszenzmesser
FL6000 Doppelmodulation Chlorophyl Fluoreszenzmesser
Produktdetails

FL6000Doppelmodulares Chlorophyl-Fluoreszenzmesser

image.png

FL6000Das doppelmodulare Chlorophyllfluoreszenzometer ist die neueste aktualisierte Version des FL3500 doppelmodularen Chlorophyllfluoreszenzometers, das speziell für ein leistungsstarkes wissenschaftliches Werkzeug entwickelt wurde, um die Mechanismen der Fotosynthese für Mikroalgen, Chlorophylle oder Zystensuspensionen wie blau-grüne oder grüne Algen zu untersuchen. Das Instrument verfügt über eine doppelkanalige Messsteuerung, die die Temperatur der Messprobe steuern kann, und ist mit einem Single-Flip-Light (STF) ausgestattet, mit einer Vielzahl von Messverfahren, die der Benutzer selbst modifizieren kann, um eine Vielzahl von vertieften Mechanismen der Chlorophyllfluoreszenz auf internationaler Ebene durchzuführen. Die Kernstruktur besteht aus einem optischen Messkopf mit einer Suspension-Standard-Probenbeschale, 3 eingebauten LED-Lichtquellen und einem 1 MHz/16-Bit-AD-Konvertierungs-PIN-Diode-Signaldetektor. Der Gewinn und die Zeit der AD-Konvertierung können über die Software gesteuert werden. Der Detektor misst Chlorophyl-Fluoreszenzsignale mit einer zeitlichen Auflösung von bis zu 4 µs (Schnellversion 1 µs).

Anwendungsbereiche:

·Phytosynthetische Eigenschaften und Stoffwechselstörungen Screening

·Erkennung von biologischem und nicht-biologischem Zwang

·Prüfung der Kompressivität oder Empfindlichkeit von Pflanzen

·Metabolische Chaos-Studien

·Arbeitsmechanismen von Photosynthesesystemen

·Strategieforschung zur photophysiologischen Reaktion auf Zwangspflanzen

image.png

Typische Proben:

·Blaue Algen (Blaue Bakterien)

·Grüne Algen

·Chlorogrüne Suspensionen

·Zystensuspension

·Pflanzenschutz

Funktionen:

·Integrierte Chlorophyllfluoreszenz-induzierte Messung, PAM-Messung (Pulsmodulation), OJIP-schnelle Fluoreszenzdynamik-Messung, QA-Reoxidationsdynamik, S-Zustands-Konvertierung, Chlorophyllfluoreszenz-Auslöschung und andere Messverfahren sind das umfassendste Chlorophyllfluoreszenzmeter der Welt.

·Dual-Modulation-Technologie, die doppelfarbige Modulation von Lichtmessungen ermöglicht, mit moduliertem optischem Licht und kontinuierlichem optischem Licht, STF (Single-Circuit-Flash), TTF (Dual-Circuit-Flash) und MTF (Multi-Circuit-Flash) sowie kundenspezifische FRR-Technologie (Fast Repetition Rate)

·Zeitauflösung bis zu 4 µs in der Standard-Version, Fast-VersionBis zu 1 µs, das aktuelle Chlorophyl-Fluoreszentmeter mit der höchsten zeitlichen Auflösung

·Die Steuereinheit ist doppelkanalig und kann einen Temperatursensor für die Temperaturregelung anschließen, eine Sauerstoffmesseinheit für die Messung der Hill-Reaktion anschließen usw.

·Extreme Empfindlichkeit mit einer Mindestdetektionsgrenze von 100 ng Chla/L

·Messlicht, optisches Licht, gesättigte Single Reflector Lichtquelle Farbe, Intensität können angepasst werden

·Die Konsole ist mit einem farbigen Touch-Display ausgestattet, um die Fluoreszenzkurven in Echtzeit anzuzeigen

Technische Parameter:

·Experimentelle Verfahren: Messung des Kautsky-Chlorophyll-Fluoreszenz-induzierten Effekts; PAM (Pulsmodulation)FluoreszenzschaltdynamikMessungen; OJIP Schnellfluoreszenzdynamische Messung; QA – Reoxidationsdynamik; S-Zustandswandlung; Schnelle Chlorophyl-Fluoreszenz-Induktion

  • Fluoreszenzparameter:

uPAMFluoreszenzschaltdynamikmessung: Messung der Fluoreszenzschaltdynamikkurve, F kann berechnet werden0Fm, Fv und F0’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRmehr als 50 Chlorophyl-Fluoreszenzparameter;

uOJIPSchnelle Fluoreszenzdynamikmessung: Messung der OJIP-Schnellfluoreszenzdynamikkurve mit F-Berechnung0FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F0FV und F0Fv / Fm, M0, Fläche, Fixfläche, SM, SS, N, Phi_P0und Psi_0und Phi_E0und Phi_D0Phi_Pav, ABS/RC und TR0/ RCund ET0/ RCund DI0/ RCMehr als 20 Parameter;

uQualitätssicherungQA-Reoxidationskinetik: Messung der QA-Reoxidationskinetikkurven zur Anpassung der Amplituden (A1, A2, A3) und der Zeitkonstanten (T1, T2, T3) der Fast-Phase, Middle-Phase und Slow-Phase während der QA-Reoxidation

uSS-Zustandstest: Messung der Fluoreszenzdacknungskurve im S-Zustandstest zur Berechnung des inaktiven Lichtsystems II (PSII)XAnzahl der Reaktionszentren

uFlash-Fluoreszenzinduktion (FFL, nur Express Edition): für die Berechnung der effektiven Antennenfläche, der Antennenkonektivität usw.

uBenutzerdefinierte Protokollfunktionen für PSII-Antennenheterogenität PSIIαmit PSIIβAnalyse, PSII effektive Antenne Schnittfläche (SPSIIMessung anderer Parameter (optionale Anpassungsfunktion)

image.png

uQualitätssicherung– Reoxidationsdynamikkurven undS-Zustand-TestFluoreszenzdecknungskurve (Li2010

·Zeitauflösung (Probenfrequenz): Hochempfindlicher Detektor mit einer Zeitauflösung von 4 µs in der Standardversion und 1 µs in der Schnellversion

·Mindestdetektionsgrenzen: Standard-Version 100ng Chla/L, Express-Version 1μg Chla/L

·Steuereinheit: mit Farb-Touch-Display für Echtzeit-Ansicht der Fluoreszenzkurven

image.png

·Messraum:

oderMessung des Blitzes: 623nm rot-orange Licht und 460nm blaues Licht, Blitzzeit 2-5µs

oderEinseitig gesättigter Blitz: Maximale Lichtintensität 170000 µmol (Photonen) / m².s, Blitzzeit 20–50 µs

oderPersistentes photochemisches Licht: Maximale Lichtintensität 3500 µmol (Photonen)/m².s

oderFluoreszenzdetektor: PIN-Photodiode

oADKonverter: 16 Bit

oderProbe-Prüfrohr: Bodenbereich 10 x 10mm, Volumen 4ml

  • Maßgeschneiderte Messkammer (optional): Messfarben für Licht, gesättigtes Licht und photochemisches Licht (Blau, Blau, Bernstein usw.) sowie Messbands (ChlA, ChlB) können individuell angepasst werden

  • Ferninfrarotlichtquelle (optional): zur Messung von F0Wellenlänge 730 nm

·Sauerstoffmessmodul (optional): Messung der Sauerstofffreisetzung durch Algen

·Temperaturregelung (optional): TR 6000 Temperaturregler, Temperaturbereich 5-60 °C, Genauigkeit 0,1 °C

  • Elektromagnetisches Rühren (optional): Zum Mischen von Proben zur Verhinderung von Abfällen, manuelle Geschwindigkeitsstellung oder automatische Software-Steuerung

  • Kommunikationsschnittstelle: RS232/USB

FluorWinSoftware: Definieren oder Erstellen von Experimenten, Lichtquellensteuerung, Datenausgabe, Analyseverarbeitung und Diagrammanzeige

image.png

Typische Anwendungen:

1. Wang Qiang, Forscher des Instituts für Wasserbiologie der Chinese Academy of Sciences, verwendete das FL3500-Chlorophyllfluoreszenzometer (Modell vor FL6000) und das TL-Pflanzen-Thermal-Release-System, um zu beweisen, dass Nitritstress zuerst die PSII-Rezeptorseite von Synechocystis sp. PCC 6803 beeinflusst (Zhan X, et al, 2017). Die Untersuchung dieses tiefgreifenden Mechanismus der Photosynthese erfordert oft die Zusammenarbeit dieser beiden Instrumente.

image.png

2.Pan Ruang Liang, Forscher des Instituts für Ökologie und Geographie der Chinesischen Akademie der Wissenschaften, und seine Fachgruppe haben mit dem FL3500-Chlorophyllfluoreszenzometer (Modell vor FL6000) die Toxizitätsforschung verschiedener schädlicher Substanzen wie Schwermetalle, Salze, giftige Verbindungen, Herbizide, Pestizide und Antibiotika in der Umwelt durchgeführt. Durch die einzigartige hochauflösende OJIP-Schnellfluoreszenzdynamikmessung, QA-Reoxidationsdynamik, S-Zustandswandlung und andere Chlorophyllfluoreszenzmessverfahren des FL3500 werden die toxischen Mechanismen und die ökologischen Auswirkungen unterschiedlicher Konzentrationen und Bearbeitungszeiten auf die Schäden an Algenphotosynthesesystemen umfassend aufgedeckt. Derzeit hat Pan Liang Fachgruppe über zwanzig hochrangige Artikel in internationalen SCI-Zeitschriften und inländischen Kernzeitschriften mit dem FL3500 (Vormodell FL6000) veröffentlicht.

image.png

Herkunft: Tschechien

Referenzen:

1. Manaa A, et al. 2019. Salztoleranz von Quinoa (Chenopodium QuinoaWilld) durch Chloroplastultrastruktur und photosynthetische Leistung bewertet. Umwelt- und Experimentalbotanik 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. Die Empfindlichkeit von Chlamydomonas reinhardtii gegen Cadmiumstress ist mit Phototaxis verbunden. Umweltwissenschaften: Prozesse und Auswirkungen 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Molekulare Mechanismen der Temperaturakklimatisierung und Anpassung in Meeresdiatomen. Die ISME-Zeitschrift, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Lösung der Nuisance Cyanobacteria Eutrophication durch Biotechnologie. Angewandte Wissenschaften 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Regelung der PSII-Funktion inCyanothezesp. ATCC 51142 während eines Licht-Dunkel-Zyklus. Fotosyntheseforschung 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Charakterisieren der Wirkung von Poast aufvon Chlorella vulgarisEin nicht-Zielorganismus. Chemosphäre 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Thylakoid-Proteom-Modulation in Erbsenpflanzen, die bei unterschiedlichen Bestrahlungen angebaut werden: quantitative proteomische Profilierung in einerModellorganismus, unterstützt durch transkriptomische Datenintegration. Die Pflanzenzeitschrift 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Chlorophyllfluoreszenz induktion und relaxation system für die kontinuierliche überwachung der photosynthetischen kapazität in photobioreaktoren. Das Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulation der Anstiegs- und Verfallskinetik von Chlorophyllfluoreszenz und P700-bezogener Absorbenzänderungen mittels einer regelbasierten kinetischen Monte-Carlo-Methode. Photosynthese Forschung. DOI: 10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY ist zur Verhütung von Photoschäden an Photosystem II bei einem PsbM-mangelnden Mutanten vonSynechozysteSp. PCC 6803. Photosynthetik, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Stammspezifische Unterschiede in den Raten der Photosystem II-Reparatur bei Picocyanobakterien korrelieren mit Unterschieden in den FtsH-Proteinspiegeln und den Isoform-Expressionsmustern. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Transkriptomische Reaktionen des marinen CyanobakteriumsProchlorococcusVirale Lyseprodukte. Umweltmikrobiologie, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Antenne Protonen Empfindlichkeit bestimmt photosynthetische Licht Ernte Strategie, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493

Online-Anfrage
  • Kontakte
  • Unternehmen
  • Telefon
  • E-Mail
  • WeChat
  • Prüfcode
  • Nachrichteninhalt

Erfolgreicher Betrieb!

Erfolgreicher Betrieb!

Erfolgreicher Betrieb!